Food Engineering Progress
Korean Society for Food Engineering
Article

다양한 염전으로부터 호기적 조건에서 분리된 미생물의 다양성 및 효소 생산능 분석에 관한 연구

이용직, 신기선1, 이상재2,*
Yong-Jik Lee, Kee-Sun Shin1, Sang-Jae Lee2,*
서원대학교 바이오코스메틱학과
1한국생명공학연구원 산업바이오소재연구센터
2신라대학교 식품공학전공&해양극한미생물연구소
Department of Bio-Cosmetics, Seowon University
1Industrial Bio-materials Research Center, Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology (KRIBB)
2Major in Food Biotechnology and Research Center for Extremophiles & Marine Microbiology, Silla University
*Corresponding author: Sang-Jae Lee, Major in Food Biotechnology and Research Center for Extremophiles & Marine Microbiology, Silla University, 140 Baegyang-daero, 700beon-gil, Sasang-Gu, Busan 46958, Korea Tel : +82-51-999-5447; Fax : +82-51-999-5458 E-mail: sans76@silla.ac.kr

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Received: Jan 30, 2020; Revised: Feb 17, 2020; Accepted: Feb 18, 2020

Abstract

This research confirmed the diversity and characterization of halophilic microorganisms isolated from the various solar salterns, collected on the inside and outside of the country. To isolate strains, the marine agar medium was basically used and cultivated at 37°C for several days aerobically. After single colony isolation, a totally of 230 pure colonies were isolated and phylogenetic analysis was carried out based on the result of 16S rDNA sequencing, indicating that isolated strains were divided into 4 phyla, 12 families, 27 genera and 64 species. Firmicutes phylum, the main phyletic group, comprised 89.6% with 3 families, 17 genera and 52 species of Bacillaceae, Staphylococcaceae and Carnobacteriaceae. To confirm whether isolated strain can produce industrially useful enzyme or not, amylase, lipase, and protease enzyme assays were performed individually, showing that 177 strains possessed at least one enzyme activity. Especially 17 strains showed all enzyme activity tested. This result indicated that isolated strains have shown the possibility of the industrial application. Therefore, this study has contributed to securing domestic genetic resources and the expansion of scientific knowledge of the halophilic microorganisms community in solar salterns.

Keywords: Salt; Halophilic; Diversity; Extracellular enzyme; Bacteria

서 론

산업용 효소 시장에서 protease는 60% 이상의 가장 큰 비율로 사용되고 있으며 식품, 세제, 섬유·펄프 및 피혁공 업, 의약품 등에 이용되어 왔으며 근래에는 미생물로부터 다량 생산하여 이용하고 있다(Singh et al., 2016). Protease 는 효소 활성의 최적 pH에 따라 알카리성, 중성, 산성 protease로 구별되며, 알카리성 protease는 주로 세제산업에 활용되는데 Bacillus sp.와 같은 세균이나, Aspergillus sp. 와 같은 곰팡이가 생산한다. 지금까지 탐색 개발된 것은 주로 알카리성 또는 고온성 균주로서 호염성 protease는 아 직 개발된 예가 많지 않다. 최근 발표된 알카리성 protease 생산 균주인 Bacillus amyloliquefaciens CMB01 균주는 부 패된 쌀죽에서 분리한 균주로서 amylase 및 lipase 활성과 함께 세제용 효소 생산 균주로서 이용가능성이 높으나 염 류에 대한 영향은 그리 크지 않아서 적용범위가 한정적이 다(Ban et al., 2003). 따라서, 고농도의 염분을 함유한 염 전과 같은 환경에서 분리한 균주가 가지고 있는 호염성의 알카리 protease는 세제용으로뿐만 아니라 식품용으로도 그 적용범위를 넓혀 이용할 수가 있다(Mayuri et al., 2019).

호염성 미생물은 소금호수, 염전, 해양 등 염분 함량이 높은 자연환경에서 다양하게 존재하고 있으며 계통학적 다 양성뿐만 아니라 염내성 amylase, nuclease, protease의 개 발과 더불어 호염성 세균이 생산하는 β-carotene은 항산화 제와 식품 색소제등 다양한 바이오 산업 분야에서 응용되 면서 최근에는 염전에서 생육하는 호염미생물의 군집분 석(Baati et al., 2010; Beak, 1987; Birbir et al., 2007; Gibtan et al., 2017), 생화학(Oren, 2008) 및 유전학적 특성 구명(Pesenti et al., 2008; VijayAnand et al., 2010) 등 천 일염 유래 호염미생물의 산업화를 위한 호염성 세균 다양 성 확보를 위해 많은 연구자들의 관심 속에서 이와 관련하 여 활발하게 연구가 수행되고 있다. 따라서 본 연구에서는 국내 염전뿐만 아니라 에티오피아의 염전으로부터 호염성 미생물을 분리하고 전분가공용, 식품 산업용 및 세제용 산 업용 효소시장 등에 응용 가능한 효소 3종(amylase, lipase, protease)의 활성을 중심으로 분리된 미생물의 다양한 분해 효소 생산 특성 탐색과 함께 작물의 생육을 촉진하는 기능 을 함으로써 화학비료를 대체하는 미생물비료로써의 활용 을 위한 auxin 생산능 분석을 실시하였다. 이는 호염성 미 생물 자원의 가치를 제고하고 산업용 효소 관련 생물공학 및 미생물비료 연구의 기본 생물소재로 활용이 가능할 것 으로 예상된다.

재료 및 방법

호염성 세균 분리 및 배양

국내외 다양한 염전으로부터 호염성 미생물 분리를 위해 각각의 샘플을 멸균된 0.85% 생리식염수에 첨가하여 voltexing으로 현탁하였다. 현탁한 샘플 1 mL을 사용하여 10−1-10−4배로 단계희석 한 후, 일반 증식배지로 해양미생물 전용배지인 marine agar (BD, NJ, USA) 배지를 제작하여 희석액을 도말하여 37°C에서 호기적으로 호염미생물을 배 양하였다. 배양 후 선택적으로 배지상에 나타나는 균의 크 기, 모양, 색깔 등 형태학적 모습을 관찰한 후 동일한 고 체배지를 사용하여 추가적으로 single colony isolation을 수행하였다. 순수분리된 균주의 혼합배지에서의 생육 가능 성을 확인하기 위하여, nutrient agar (BD, NJ, USA), R2A agar (BD, NJ, USA), 및 tryptic soy agar (BD, NJ, USA) 에 평판 도말법을 이용하여 37°C에서 7일간 정치 배양을 하였다.

16S rDNA 염기서열의 계통학적 분석

국내외 다양한 염전으로부터 호기적 배양 조건에서 분리 된 균주들의 분자생물학적 동정을 위해 marine agar (BD, NJ, USA) 배지에 각각 분리된 균주의 colony가 배양된 상 태의 고체 배지를 ㈜바이오팩트에 보내어 16S rDNA 염기 서열의 분석을 의뢰하였다. 분석된 16S rDNA 염기서열로 부터 가장 유사한 근연 균주의 확인을 위하여 NCBI wensite의 BLAST search program (https://blast.ncbi.nlm. nih.gov/Blast.cgi)과 ㈜천랩의 Ezbiocloud (https://www. ezbiocloud.net/)를 사용하였다. 계통학적 분석은 Clustal W 및 Mega 6.0 프로그램을 이용하여 확인하였다.

분해 효소 생산능 분석

분리된 호염성 미생물의 세포외 분해 효소 amylase, lipase, protease 생산능 확인을 위하여 각각의 효소와 특이 적으로 반응할 기질 성분이 포함된 고체평판 선별배지를 사용하였다. 먼저 amylase 생산능은 0.2% soluble starch (BD, NJ, USA)를, lipase 생산능은 1% Tween 80 (Sigma, MO, USA)을, protease 생산능은 2% skim milk (BD, NJ, USA)를 기질로 선택하여 marine agar (BD, NJ, USA) 배 지에 각각 첨가하여 제조하였으며 분리된 균주를 직접 접 종하여 37°C에서 7일 배양한 후 투명환(Clear zone)의 직 경으로 조사하였다. 분리된 균주의 효소활성 분해능 평가 는 배양 후 나타나는 접종균 주위의 투명환의 크기(+++ : > 7 mm, ++ : 4~6 mm, + : 1~3 mm)로 나타내었다.

옥신(Auxin) 생산능 분석

분리된 균주의 auxin 생산능은 0.1% L-tryptophan이 첨가된 marin broth (BD, NJ, USA) 배지에 순수분리된 colony를 tooth-picking 한 후 37°C에서 5일 배양하여 Salkowski 시약(35 % HClO4 50 mL + 0.5 M FeCl3 1 mL) 800 uL을 배양 상등액 400 uL에 섞어준 후 어두운 곳에서 30 min 반응시켜 육안으로 확인하여 붉은 색깔 변화 정도 에 따라 옥신 생성능 정도를 표시하였다(짙은 붉은색: +++; 일반 붉은색: ++; 옅은 붉은색: +; 주황색: w; 무색: -).

결과 및 고찰

호염성 세균 분리

국내외 염전에서 산업적 활용이 용이할 것으로 생각되는 호기적으로 생육 가능한 호염성 미생물을 분리하고자 marine agar 배지에 시료를 희석, 도말하여 배양한 후, 배 양된 colony의 모양, 색깔 등 형태학적 특징을 육안으로 구분이 가능한 균주들을 대상으로 동일한 고체배지를 사용 하여 2차로 단일 균주 분리를 수행하였다. 그 결과 Table 1에서 나타낸 것처럼 국내 신안 토판염과 장판염에서는 100균주와 26균주가 각각 분리되었으며 국내 곰소 타일염 에서는 36균주가 분리되었다. 그리고 국외 염전인 에티오 피아 rock salt와 lake salt에서는 각각 54균주와 14균주가 분리되었으며 본 실험을 통하여 호염성 미생물 총 230 균 주를 순수 분리하였다. 국내 염전에서 분리된 균주의 경우 상대적으로 토판염에서 많은 호염성 미생물이 분리되었는 데 이는 염전에 사용한 바닥소재에 따라 천일염은 토판염, 장판염, 타일염으로 구분되는데 장판염이나 타일염은 가소 성소재나 타일을 이용한 바닥에서 생산된 천일염이며 토판 염은 갯벌을 단단하게 다진 결정지 판 위에서 생산되는 천 일염이기에 갯벌에서 생육하는 다양한 호염성 미생물 균주 가 함께 분리된 것으로 예상된다(Park et al., 2000; Lee et al., 2007). 또한 주요성분이 무기염으로 이루어진 marine agar 배지는 해양미생물 배양에 유리한 배지이기에 산업적 활용가능성을 확인하기 위하여 대량 배양 등에 많이 활용 되는 혼합 배지(nutrient agar, R2A agar, tryptic soy agar) 에서의 분리 균주들의 생육 가능성을 확인한 결과 230균 주 중 62균주(26.9%)가 최소 1종류 이상의 혼합 배지에서 생육이 가능(weak growth 포함)한 것을 확인하였다. 이는 호염성 미생물세균의 탐색에 있어서 분리 배지의 구성성분 이 어느 정도 영향을 미치는 것으로 생각되며, 본 연구 결 과를 바탕으로 호염성 미생물 분리를 위한 최적 배지는 marine agar 배지로 나타났다. 또한 최적의 생육 pH 조건 을 확인하기 위하여 pH를 5, 7, 9로 각각 조절한 marine agar 배지에 분리 균주들의 생육을 확인해본 결과 분리된 모든 균주는 pH 7에서 생육이 가능하였으며 이중 19균주 는 pH 5에서도 생육이 가능(weak growth 포함)하였으며 pH 9에서 생육 가능(weak growth 포함)한 균주는 209균주 였다(Table 1).

Table 1. Isolation and identification of aerobically cultured halophilic microorganisms isolated from the commercial salts
No. Source Isolate number NA# R2A TSA MA*
pH5 pH7 pH9
1 KTB062 -c - - - +a +
2 KTB091 - - - - + +
3 KTB151 - + - - + +
4 KTB274 - - - - + +
5 KTB094 - - - - + +
6 KTB064 - - - - + +
7 KTB093 - - - - + +
8 KTB012 - - - - + +
9 KTB052 - - - - + +
10 KTB131 - - - - + +
11 KTB254 - - - - + +
12 KTB021 - - - - + +
13 KTB102 - - - - + +
14 KTB041 - - - - + +
15 KTB241 - - - - + +
16 KTB101 - - - - + +
17 KTB202 - + - - + +
18 KTB051 - + - - + +
19 KTB092 + + - - + +
20 KTB061 - - + - + +
21 KTB201 - - - - + +
22 12ST1-1 - - - - + +
23 12ST1-2 - - - - + +
24 12ST1-3 + + + - + +
25 신안 토판염 12ST1-4 - - - - + +
26 12ST1-5 - - - - + +
27 12ST1-6 - - - - + +
28 12ST1-7 - - - - + +
29 12ST1-8 - - - - + +
30 12ST1-9 + + + - + +
31 12ST1-10 + + + - + +
32 12ST1-11 - - - - + +
33 12ST1-12 - - - - + +
34 12ST1-13 - - - - + +
35 12ST1-14 - - - - + +
36 12ST1-15 - - - - + +
37 12ST1-16 - - - - + +
38 12ST1-17 - - - - + +
39 12ST1-18 + + + - + +
40 12ST1-19 - - - - + +
41 12ST1-20 - - - - + +
42 12ST2-1 - - - - + +
43 12ST2-2 - - - - + +
44 12ST2-3 - - - - + +
45 12ST2-4 - - - - + +
46 12ST2-5 - wb - - + +
47 12ST2-6 - - - - + +
48 12ST2-7 - - - - + +
49 12ST2-8 + + + - + +
50 12ST2-9 - - - - + +
51 12ST2-10 - - - - + +
52 12ST2-13 - - - - + +
52 12ST2-13 - - - - + +
53 12ST2-14 - - - - + +
54 12ST2-15 - - - - + +
55 12ST2-16 - - - - + +
56 12ST2-18 - - - - + +
57 12ST2-19 - - - - + +
58 12ST2-20 - - - - + +
59 13ST1-1 - - - - + +
60 13ST1-2 - - - w + +
61 13ST1-3-1 - - - - + +
62 13ST1-4 - - - w + +
63 13ST1-5 + + + - + +
64 13ST1-7 - - - - + +
65 13ST1-8 - - w w + +
66 13ST1-9 - - w w + +
67 13ST1-10 + + + - + +
68 13ST1-11 - - - - + +
69 13ST1-12 - - - - + +
70 13ST1-13 - - - - + +
71 13ST1-14 - - - - + +
72 13ST1-15 - - - - + +
73 13ST1-16 - - - - + +
74 신안 토판염 13ST1-17 - - - - + +
75 13ST1-18 + - + - + +
76 13ST1-19 - w - - + +
77 13ST1-20 - - - - + +
78 13ST2-1 - - - - + +
79 13ST2-2 - - - - + +
80 13ST2-3 - - - - + +
81 13ST2-4 - + - - + +
82 13ST2-5 + + + - + +
83 13ST2-6 + - - - + +
84 13ST2-7 - - - - + +
85 13ST2-8 + - + - + +
86 13ST2-9 - - - - + +
87 13ST2-11 - - - - + +
88 13ST2-12-1 - - - - + +
89 13ST2-13 - + - - + +
90 13ST2-14 - - - - + +
91 13ST2-15 - - - - + +
92 13ST2-16 - - - - + +
93 13ST2-18 - - - - + +
94 13ST2-19 - - - - + +
95 13ST2-20 - - - - + +
96 KTB011 - w w - + +
97 KTB022 - - - - + +
98 KTB023 - - w - + +
99 KTB081 - - w - + +
100 KTB272 - - w - + +
101 ST3rd#203 - + + - + +
102 ST2nd#107 - - - - + +
103 ST2nd#108 - - + - + +
104 ST3rd#201 - - - - + +
105 ST3rd#205 - - + - + +
106 ST3rd#239 - - - - + +
107 ST2nd#109 - - - - + +
108 ST2nd#110 - - - - + +
109 ST3rd#210 - - - - + +
110 ST3rd#212 - - - - + +
111 ST3rd#222 + + + - + +
112 ST3rd#229 + + + - + +
113 신안 장판염 13SJ1-1 + + + - + +
114 13SJ2-1 - - - - + +
115 14SJ1-1 - - - - + +
116 14SJ1-2 - - - - + +
117 ST2nd#101 - - - w + +
118 ST3rd#204 - - w w + +
119 ST3rd#225 w - - w + +
120 ST3rd#228 w - w w + +
121 ST3rd#231 + + + + + +
122 ST3rd#238 + + - w + +
123 ST3rd#241-1 - - - + + +
124 ST3rd#242 - - - w + +
125 STCP#202 - w - w + +
126 STCP#209 + + - + + +
127 GL1-1 - - - - + +
128 GL1-2 - - - - + +
129 GT1-1 - - - - + +
130 GT1-2 - - - - + +
131 GT1-3 - - - - + +
132 GT1-4 - - - - + +
133 GT1-5 - - - - + +
134 GT1-6 - - - - + +
135 GT1-7-1 - - - - + +
136 GT1-8 - - - - + +
137 GT1-9 - + - - + +
138 곰소 타일염 GT1-10 - - - - + +
139 GT1-11 - - - - + +
140 GT1-12 - - - - + +
141 GT1-13 - - - - + +
142 GT2-1 + - + - + +
143 GT2-2 - - - - + +
144 GT2-3 - - - - - w
145 GT2-4 - - - - + +
146 GT2-5 - + - - + +
147 GT2-6 - - - - + -
148 GT2-7 - + - - + +
149 GT2-9 - - - - + +
150 GT2-10 - - - - + +
151 GS-RS 1A + + + - + +
152 GS-RS 5A + + + - + w
153 GS-RS 1D + + + - + -
154 GS-RS 2D w w + - + -
155 GS-RS 4D + + + - + -
156 곰소 타일염 GS-RS 5D + + + - + -
157 GS-OS 1A + + + - + -
158 GS-OS 2A - + - - + -
159 GS-OS 6A - - - - + +
160 GS-OS 7A + + + - + -
161 GS-OS 4B + + + - + +
162 GS-OS 6B + + + - + -
163 ER1-1 - - + - + -
164 ER1-2 - - + - + -
165 ER1-3 - w w - + +
166 ER1-4 - w w - + +
167 ER1-5 - - - - + +
168 ER1-6 - - - - + +
169 ER1-7 - - - - + +
170 ER1-8 - - - - + +
171 ER1-9 - - - - + +
172 ER1-10 - - - - + +
173 ER1-11 - - - - + +
174 ER2-1 - - - - w w
175 ER2-3 - - w - + +
176 ER2-4 - - w - + +
177 ER2-5 - - + - + +
178 ER2-6 - w + - + +
179 ER2-7 - w + - + +
180 ER2-8 - - - - + +
181 에티오피아 ER2-9 - w + - + -
182 Rock salt ER2-10 - w + - + -
183 R450201 + + + - + -
184 R450202 - - - w + -
185 R450203 + + + w + -
186 R450204 - - - w + -
187 R450205 + + + - + -
188 R450206 + + + - + -
189 R450301 + + + - + -
190 R450302 - + + - + -
191 R450303 - - w - + -
192 R450304-1 - + w - + -
193 R450305 + + + - + -
194 R450306 + + - - + -
195 R450307 + + + - + -
196 R450308 + + + - + w
197 R450401 + + + - + w
198 R450402 + + + - + -
199 R450403 - + + - + -
200 R450405 + + + - + +
201 R450408 - - - - + -
202 R450409-1 - - - - + w
203 R450501 - - - - + w
204 R450502 - - - - + w
205 R450503 - - - - + -
206 R450504 - - - - + w
207 R450505 - - - - + -
208 에티오피아 R450506-1 - - - - + -
209 Rock salt R450507-1 - - - w + w
210 ERB012 - - - - + +
211 ERB032 - - + - + +
212 ERB054 - - - + +
213 ERB061 - - - - + +
214 ERB081 - - + - + +
215 ERB082 - - - w + +
216 ERB112 - - - - + +
217 EL1-1 - - + - + +
218 EL1-2 - - w - + +
219 EL1-4 - w w - + +
220 EL1-5 - - + - + -
221 EL1-6 - - w - + +
222 EL1-7 - w w - + +
223 에티오피아 EL1-8 - - + - + -
224 Lake salt EL2-1 - - + - + +
225 EL2-2 - - + - + +
226 EL2-4 - - - - + +
227 EL2-5 - - + - + +
228 EL2-7 - - + - + +
229 EL2-9 - - + - + +
230 EL2-10 - - + - + +

: Nutrient agar

: Marine agar

: Well-growth

: Weak growth

:No growth.

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16S rDNA 염기서열의 계통학적 분석

국내외 다양한 염전으로부터 호기적으로 분리된 230균주 의 16S rDNA 염기서열을 바탕으로 NBLAST program과 Ezbiocloud를 사용하여 미생물 동정을 실시한 결과 크게 4 문 7목 12과 27속 64종으로 나타났으며(Table 2), 분리 균 주와 근연 균주 및 상동성을 Table 3에 나타내었다. 또한 분리 동정된 균주들 간의 유연관계를 확인하기 위하여 계 통수를 작성하였다(결과 미제시). Table 2에서 보는 바와 같이 Firmicutes (Bacilli)가 89.6%로 가장 우점도가 높았고, Proteobacteria (Gammaproteobacteria)가 9.6%, Actinobaceria 와 Bacteroidetes는 각각 0.4%로 나타났다. Firmicutes 문은 Bacillaceae 97.6%, Staphylococcaceae 1.9%, Carnobacteriaceae 0.5%로 구성되었으며, 총 3과로 17속 52종이 분리되었 다. 그리고 약 9.56%가 분리된 Proteobacteria (Gammaproteobacteria) 문에서는 Kangiellaceae 45.5%, Halomonadaceae 18.2%, Marinobacter_f 13.6%, Moraxellaceae 9.1%, 그리고 Alteromonadaceae, Oceanospirillaceae와 Pseudomonadaceae 가 각각 4.5%로 구성되었으며, 총 7과로 8속 10종이 분리 되었다. Actinobateria 문과 Firmicutes 문에서 Micrococcus 속과 Gramella 속 1종씩이 분리되었다. 본 연구에서 가장 많이 분리된 Bacillaceae 과는 Halobacillus sp.이 염전에서 많이 분리된다는 것이 알려져 있기에 본 연구에서도 국내 외 다양한 염전 시료에서 43.9%로 가장 많이 분리된 것으 로 예상되었으며(Na et al., 2011) Photobacterium 속, Vibrio 속과 같은 어류병원체 관련 균주는 분리되지 않았 다. 그리고 국외 염전 시료에서만 Oceanobacillus sp. 25 균주가 분리되었는데 이는 분리원이 위치한 지역이 지구상 에서 가장 평균기온이 높은 곳이며 우수한 내염성을 가진 균주로 알려져 있기에 고온균이며 내염성이 우수한 균주의 분리가능성을 나타냈다(Morell, 2005; Lu et al., 2001). 또 한 분리 균주 중 근연 균주와의 16S rDNA 염기서열 상동 성이 낮은 10균주(96% 이하)는 신종 균주 가능성을 나타 내는 것으로 국외 염전 시료에서 6균주와 국내 염전 시료 에서 4균주(과제기탁번호: NMC5-B330, NMC6-B431, NMC6-B408, NMC4-B516)가 분리되었으며 국내에서 분리 된 균주들은 모두 국내 생물 자원의 다양성 확보 차원에서 큰 의미가 있을 것으로 생각된다.

Table 2. Phylum analysis of aerobically cultured halophilic microorganisms isolated from the commercial salts
fep-24-1-62-t2
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Table 3. Representative sequences of an aerobically isolated halophilic strains from the commercial salts
No Isolate Name Closed species Closed strain number Similarity (%) Extracellular enzyme activity Auxin Deposited number
Amylase Lipase Protease
1 KTB062 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.46 -a - - w NMC6-B390
2 KTB091 Halobacillus dabanensis D-8 97.46 - - - w NMC6-B391
3 KTB151 Halobacillus alkaliphilus FP5 99.57 - - - w NMC6-B392
4 KTB274 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.31 - - - w NMC6-B393
5 KTB094 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.35 - ++ - w NMC6-B394
6 KTB064 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.45 - - - w NMC6-B395
7 KTB093 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.68 - - - w NMC6-B396
8 KTB012 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.66 - - - w NMC6-B397
9 KTB052 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.79 - - - w NMC6-B398
10 KTB131 Halobacillus mangrovi MS10 99.04 - - - w NMC6-B399
11 KTB254 Halobacillus mangrovi MS10 99.30 - - - w NMC6-B400
12 KTB021 Halobacillus mangrovi MS10 99.47 - - - w NMC6-B401
13 KTB102 Halobacillus alkaliphilus FP5 99.28 - - - - NMC6-B402
14 KTB041 Halobacillus alkaliphilus FP5 99.28 - - - - NMC6-B403
15 KTB241 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.78 - + - w NMC6-B404
16 KTB101 Halobacillus alkaliphilus FP5 99.45 - - - - NMC6-B405
17 KTB202 Halobacillus alkaliphilus FP5 99.59 - - - - NMC6-B406
18 KTB051 Halobacillus alkaliphilus FP5 97.09 - - - - NMC6-B407
19 KTB092 Halobacillus alkaliphilus FP5 99.02 - - - - NMC6-B412
20 KTB061 Halobacillus trueperi DSM 10404 99.43 - ++ - w NMC6-B417
21 KTB201 Halobacillus alkaliphilus FP5 97.69 - - - - NMC6-B418
22 12ST1-1 Halobacillus halophilus DSM 2266 97.87 +++ - - - NMC5-B320
23 12ST1-2 Pontibacillus chungwhensis BH030062 99.34 +++ - - - NMC5-B321
24 12ST1-3 Bacillus vietnamensis 15-1 98.32 +++ - - - NMC5-B322
25 12ST1-4 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.17 +++ - - - NMC5-B323
26 12ST1-5 Halobacillus mangrovi MS10 99.06 +++ - - - NMC5-B324
27 12ST1-6 Halobacillus mangrovi MS10 99.05 +++ - - - NMC5-B325
28 12ST1-7 Halobacillus mangrovi MS10 98.58 +++ - - - NMC5-B326
29 12ST1-8 Halobacillus campisalis ASL-17 98.71 +++ - - - NMC5-B327
30 12ST1-9 Bacillus vietnamensis 15-1 98.62 +++ - - - NMC5-B328
31 12ST1-10 Bacillus hwajinpoensis SW-72 96.89 + - - - NMC5-B329
32 12ST1-11 Bacillus oryzaecorticis R1 92.17 +++ - - - NMC5-B330
33 12ST1-12 Halobacillus mangrovi MS10 98.49 +++ - - - NMC5-B331
34 12ST1-13 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.90 +++ - - - NMC5-B332
35 12ST1-14 Thalassobacillus devorans G-19.1 97.23 +++ +++ - - NMC5-B333
36 12ST1-15 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.00 +++ - +++ - NMC5-B334
37 12ST1-16 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.63 +++ - - - NMC5-B335
38 12ST1-17 Pontibacillus chungwhensis BH030062 99.14 ++ - +++ - NMC5-B336
39 12ST1-18 Bacillus vietnamensis 15-1 98.62 +++ - - - NMC5-B337
40 12ST1-19 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.81 +++ - - - NMC5-B338
41 12ST1-20 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.34 +++ - - - NMC5-B339
42 12ST2-1 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.42 +++ - +++ - NMC5-B340
43 12ST2-2 Thalassobacillus cyri CCM7597 99.36 +++ - - - NMC5-B341
44 12ST2-3 Halobacillus mangrovi MS10 98.03 +++ - - - NMC5-B342
45 12ST2-4 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.44 +++ - - - NMC5-B343
46 12ST2-5 Thalassobacillus pellis 18OM 98.13 - - - - NMC5-B344
47 12ST2-6 Halobacillus mangrovi MS10 98.31 +++ - - - NMC5-B345
48 12ST2-7 Halobacillus dabanensis D-8 97.58 +++ - - - NMC5-B346
49 12ST2-8 Bacillus vietnamensis 15-1 97.92 +++ - - - NMC5-B347
50 12ST2-9 Halobacillus dabanensis D-8 98.42 +++ - - - NMC5-B348
51 12ST2-10 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.25 +++ - - - NMC5-B349
52 12ST2-13 Bacillus hwajinpoensis SW-72 99.36 +++ - - - NMC5-B350
53 12ST2-14 Pontibacillus chungwhensis BH030062 98.96 +++ - - - NMC5-B351
54 12ST2-15 Halobacillus mangrovi MS10 98.40 +++ - - - NMC5-B352
55 12ST2-16 Halobacillus dabanensis D-8 97.38 +++ - - - NMC5-B353
56 12ST2-18 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.24 +++ - - - NMC5-B354
57 12ST2-19 Thalassobacillus devorans G-19.1 97.30 +++ - - - NMC5-B355
58 12ST2-20 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.06 +++ - - - NMC5-B356
59 13ST1-1 Halobacillus mangrovi MS10 98.58 +++ - - - NMC5-B357
60 13ST1-2 Halobacillus halophilus DSM 2266 99.36 ++ - ++ - NMC5-B358
61 13ST1-3-1 Halobacillus andaensis NEAU-ST10-40 97.55 ++ - - - NMC5-B359
62 13ST1-4 Halobacillus dabanensis D-8 97.94 +++ ++ - - NMC5-B360
63 13ST1-5 Bacillus vietnamensis 15-1 98.72 +++ - + - NMC5-B361
64 13ST1-7 Halobacillus mangrovi MS10 98.20 +++ - ++ - NMC5-B362
65 13ST1-8 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.45 +++ - - - NMC5-B363
66 13ST1-9 Halobacillus halophilus DSM 2266 96.84 +++ - - - NMC5-B364
67 13ST1-10 Bacillus vietnamensis 15-1 98.21 +++ + + - NMC5-B365
68 13ST1-11 Pontibacillus chungwhensis BH030062 98.86 +++ - ++ - NMC5-B366
69 13ST1-12 Halobacillus naozhouensis JSM 071068 98.53 +++ - ++ - NMC5-B367
70 13ST1-13 Thalassobacillus cyri CCM7597 99.54 +++ - - - NMC5-B368
71 13ST1-14 Halobacillus halophilus DSM 2266 98.91 +++ - ++ - NMC5-B369
72 13ST1-15 Halobacillus mangrovi MS10 98.79 +++ - - - NMC5-B370
73 13ST1-16 Halobacillus trueperi DSM 10404 97.87 +++ - - - NMC5-B371
74 13ST1-17 Halobacillus mangrovi MS10 98.48 +++ - - - NMC5-B372
75 13ST1-18 Bacillus vietnamensis 15-1 99.02 +++ - - - NMC5-B373
76 13ST1-19 Halobacillus dabanensis D-8 99.45 +++ - - - NMC5-B374
77 13ST1-20 Halobacillus mangrovi MS10 98.68 +++ - - - NMC5-B375
78 13ST2-1 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.25 +++ - - - NMC5-B376
79 13ST2-2 Halobacillus halophilus DSM 2266 99.36 +++ - - - NMC5-B377
80 13ST2-3 Halobacillus trueperi MSS-402 98.15 +++ - - - NMC5-B378
81 13ST2-4 Halobacillus dabanensis D-8 97.94 +++ - - - NMC5-B379
82 13ST2-5 Bacillus aquimaris 15-1 98.72 +++ - - - NMC5-B380
83 13ST2-6 Halobacillus mangrovi MS10 97.65 +++ - - - NMC5-B381
84 13ST2-7 Pontibacillus salipaludis 9DM 98.52 +++ - - - NMC5-B382
85 13ST2-8 Bacillus aquimaris 15-1 98.42 +++ ++ +++ - NMC5-B383
86 13ST2-9 Halobacillus mangrovi MS10 97.94 +++ - - - NMC5-B384
87 13ST2-11 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.43 +++ - - - NMC5-B385
88 13ST2-12-1 Pontibacillus salipaludis BH030062 98.58 +++ +++ - - NMC5-B386
89 13ST2-13 Halobacillus campisalis MS10 99.44 +++ - - - NMC5-B387
90 13ST2-14 Halobacillus mangrovi MS10 97.52 +++ - - - NMC5-B388
91 13ST2-15 Halobacillus hunanensis JSM 071077 98.99 ++ - - - NMC5-B389
92 13ST2-16 Halobacillus trueperi MS10 97.44 +++ - + - NMC5-B390
93 13ST2-18 Halobacillus campisalis MS10 98.50 +++ - ++ - NMC5-B391
94 13ST2-19 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.52 +++ - - - NMC5-B392
95 13ST2-20 Halobacillus halophilus DSM 2266 99.36 +++ - - - NMC5-B393
96 KTB011 Halobacillus trueperi DSM 10404 100.00 +++ ++ +++ - NMC4-B482
97 KTB022 Halobacillus alkaliphilus FP5 100.00 +++ - ++ - NMC4-B483
98 KTB023 Halobacillus halophilus DSM 2266 99.87 +++ - +++ - NMC4-B484
99 KTB081 Bacillus hwajinpoensis SW-72 100.00 ++ ++ +++ - NMC4-B485
100 KTB272 Pontibacillus chungwhensis BH030062 100.00 +++ +++ + - NMC4-B486
101 ST3rd#203 Bacillus berkeleyi KMM 6244 95.89 - - - - NMC6-B408
102 ST2nd#107 Kangiella koreensis DSM 16069 96.62 - +++ +++ + NMC6-B427
103 ST2nd#108 Kangiella koreensis DSM 16069 96.43 - +++ +++ + NMC6-B428
104 ST3rd#201 Kangiella koreensis DSM 16069 96.88 - +++ + + NMC6-B429
105 ST3rd#205 Kangiella koreensis DSM 16069 95.98 - +++ + w NMC6-B430
106 ST3rd#239 Kangiella koreensis DSM 16069 95.47 - +++ + + NMC6-B431
107 ST2nd#109 Kangiella koreensis DSM 16069 97.87 - +++ +++ + NMC6-B432
108 ST2nd#110 Kangiella koreensis DSM 16069 96.85 - +++ +++ ++ NMC6-B433
109 ST3rd#210 Kangiella koreensis DSM 16069 96.42 - +++ + + NMC6-B434
110 ST3rd#212 Kangiella koreensis DSM 16069 96.11 - +++ + ++ NMC6-B435
111 ST3rd#222 Marinobacter algicola DG893 96.20 +++ - - - NMC6-B440
112 ST3rd#229 Halomonas ventosae Al12 97.97 +++ - - ++ NMC6-B450
113 13SJ1-1 Bacillus vietnamensis 15-1 99.11 +++ - - - NMC5-B316
114 13SJ2-1 Halobacillus mangrovi MS10 97.73 +++ - - - NMC5-B317
115 14SJ1-1 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.43 +++ - - - NMC5-B318
116 14SJ1-2 Pontibacillus chungwhensis BH030062 98.66 +++ - - - NMC5-B319
117 ST2nd#101 Kangiella koreensis DSM 16069 100.00 - +++ + - NMC4-B514
118 ST3rd#204 Gramella aestuariivivens BG-MY13 96.05 - +++ + - NMC4-B515
119 ST3rd#225 Marinobacter segnicrescens SS011B1-4 95.99 - +++ - - NMC4-B516
120 ST3rd#228 Halomonas saccharevitans AJ275 97.07 - - - - NMC4-B517
121 ST3rd#231 Marinobacterium aestuariivivens DB-1 100.00 - +++ + - NMC4-B518
122 ST3rd#238 Halobacillus mangrovi MS10 100.00 +++ + +++ - NMC4-B519
123 ST3rd#241-1 Salinimonas chungwhensis YelD216 96.86 + +++ - - NMC4-B520
124 ST3rd#242 Halomonas ventosae Al12 98.41 - - - - NMC4-B521
125 STCP#202 Marinobacter algicola DG893 96.11 - - - - NMC4-B522
126 STCP#209 Bacillus subtilis subsp. Inaquosorum KCTC 13429 99.93 +++ - +++ - NMC4-B523
127 GL1-1 Halobacillus mangrovi MS10 98.87 +++ - - - NMC5-B394
128 GL1-2 Pontibacillus chungwhensis DSM 10404 98.43 +++ + - - NMC5-B395
129 GT1-1 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.53 +++ - ++ - NMC5-B396
130 GT1-2 Halobacillus locisalis MSS-155 98.43 +++ - - - NMC5-B397
131 GT1-3 Pontibacillus chungwhensis BH030062 98.20 - ++ - - NMC5-B398
132 GT1-4 Halobacillus locisalis MSS-155 99.27 - - - - NMC5-B399
133 GT1-5 Pontibacillus yanchengensis Y32 99.54 - - - - NMC5-B400
134 GT1-6 Halobacillus trueperi DSM 10404 98.63 +++ - - - NMC5-B401
135 GT1-7-1 Aquibacillus koreensis BH30097 97.81 - - - - NMC5-B402
136 GT1-8 Halobacillus locisalis MSS-155 98.81 - - - - NMC5-B403
137 GT1-9 Halobacillus mangrovi MS10 99.07 +++ - - - NMC5-B404
138 GT1-10 Thalassobacillus hwangdonensis AD-1 98.64 - - - - NMC5-B405
139 GT1-11 Thalassobacillus hwangdonensis AD-1 98.64 - - - - NMC5-B406
140 GT1-12 Pontibacillus yanchengensis Y32 99.54 - - - - NMC5-B407
141 GT1-13 Aquibacillus koreensis BH30097 97.81 - - - - NMC5-B408
142 GT2-1 Virgibacillus chiguensis NTU-101 97.83 - - - - NMC5-B409
143 GT2-2 Halobacillus dabanensis D-8 98.13 +++ ++ - - NMC5-B410
144 GT2-3 Pontibacillus chungwhensis BH030062 96.60 - - - - NMC5-B411
145 GT2-4 Halobacillus profundi IS-Hb4 97.69 +++ - - - NMC5-B412
146 GT2-5 Bacillus hwajinpoensis SW-72 98.63 +++ - - - NMC5-B413
147 GT2-6 Filobacillus milosensis DSM 13259 96.98 - - - - NMC5-B414
148 GT2-7 Halobacillus halophilus DSM 2266 96.93 - - - - NMC5-B415
149 GT2-9 Virgibacillus halodenitrificans SK37 96.60 - - + - NMC5-B416
150 GT2-10 Halobacillus locisalis MSS-155 97.43 +++ - - - NMC5-B417
151 GS-RS 1A Micrococcus luteus NCTC 2665 100.00 - ++ - - NMC4-B86
152 GS-RS 5A Bacillus niabensi 4T19 100.00 +++ - - - NMC4-B87
153 GS-RS 1D Pseudomonas oryzihabitans NBRC 102199 100.00 - ++ + - NMC4-B88
154 GS-RS 2D Desemzia incerta DSM 2058 99.86 - - - - NMC4-B89
155 GS-RS 4D Acinetobacter pittii CIP 70.29 100.00 - ++ - - NMC4-B90
156 GS-RS 5D Acinetobacter pittii CIP 70.29 100.00 - ++ - - NMC4-B91
157 GS-OS 1A Bacillus haikouensis C-89 100.00 +++ - - - NMC4-B92
158 GS-OS 2A Bacillus boroniphilus JCM 21738 100.00 +++ - - - NMC4-B93
159 GS-OS 6A Staphylococcus caprae ATCC 35538 99.80 +++ +++ - - NMC4-B94
160 GS-OS 7A Staphylococcus cohnii subsp. urealyticus ATCC 49330 100.00 - ++ - - NMC4-B95
161 GS-OS 4B Staphylococcus argenteus MSHR1132 99.86 - +++ ++ - NMC4-B96
162 GS-OS 6B Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 99.93 - - - - NMC4-B97
163 ER1-1 Virgibacillus jeotgali NS3012 96.64 - + ++ - NMC5-B432
164 ER1-2 Virgibacillus phasianinus LM2416 97.62 - + ++ - NMC5-B433
165 ER1-3 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.24 +++ - + - NMC5-B434
166 ER1-4 Oceanobacillus picturae LMG 19492 98.90 - - +++ - NMC5-B435
167 ER1-5 Halobacillus naozhouensis JSM 071068 98.27 - - + - NMC5-B436
168 ER1-6 Halobacillus hunanensis JSM 071077 98.54 - - - - NMC5-B437
169 ER1-7 Halobacillus hunanensis JSM 071077 97.67 - - - - NMC5-B438
170 ER1-8 Halobacillus andaensis NEAU-ST10-40 95.49 - - - - NMC5-B439
171 ER1-9 Halobacillus hunanensis JSM 071077 98.91 +++ - - - NMC5-B440
172 ER1-10 Halobacillus hunanensis JSM 071077 99.45 +++ - - - NMC5-B441
173 ER1-11 Halobacillus naozhouensis JSM 071068 98.27 - - + - NMC5-B442
174 ER2-1 Halobacillus locisalis MSS-155 96.98 - - - - NMC5-B443
175 ER2-3 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.13 +++ ++ + - NMC5-B444
176 ER2-4 Oceanobacillus iheyensis HTE831 95.39 - - - - NMC5-B445
177 ER2-5 Oceanobacillus picturae LMG 19492 98.27 - - - - NMC5-B446
178 ER2-6 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.30 +++ ++ - - NMC5-B447
179 ER2-7 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.78 - + ++ - NMC5-B448
180 ER2-8 Halobacillus locisalis MSS-155 99.20 - ++ + - NMC5-B449
181 ER2-9 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.30 - - - - NMC5-B450
182 ER2-10 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.30 - + - - NMC5-B451
183 R450201 Bacillus paralicheniformis KJ-16 97.92 ++ + +++ - NMC4-B383
184 R450202 Oceanobacillus limi H9B 97.94 - - +++ - NMC4-B384
185 R450203 Bacillus paralicheniformis KJ-16 97.66 ++ + +++ - NMC4-B385
186 R450204 Oceanobacillus limi H9B 99.22 - + +++ - NMC4-B386
187 R450205 Bacillus sonorensis NSP9.1 97.34 ++ + +++ - NMC4-B387
188 R450206 Bacillus paralicheniformis KJ-16 97.72 ++ + +++ - NMC4-B388
189 R450301 Sediminibacillus halophilus EN8d 97.55 +++ + +++ - NMC4-B389
190 R450302 Sediminibacillus halophilus EN8d 98.06 - - +++ - NMC4-B390
191 R450303 Sediminibacillus halophilus EN8d 98.87 - - +++ - NMC4-B391
192 R450304-1 Sediminibacillus halophilus EN8d 96.61 ++ - - - NMC4-B392
193 R450305 Bacillus sonorensis NSP9.1 97.42 ++ - - - NMC4-B393
194 R450306 Bacillus sonorensis NSP9.1 97.95 ++ - - - NMC4-B394
195 R450307 Bacillus sonorensis NSP9.1 98.00 ++ - - - NMC4-B395
196 R450308 Bacillus sonorensis NSP9.1 97.16 +++ - +++ - NMC4-B396
197 R450401 Bacillus paralicheniformis KJ-16 97.59 +++ ++ +++ - NMC4-B397
198 R450402 Bacillus paralicheniformis KJ-16 97.37 +++ ++ +++ - NMC4-B398
199 R450403 Bacillus sonorensis NSP9.1 96.38 +++ - +++ - NMC4-B399
200 R450405 Bacillus paralicheniformis KJ-16 99.02 ++ - +++ - NMC4-B400
201 R450408 Bacillus sonorensis NSP9.1 97.88 - - - - NMC4-B401
202 R450409-1 Gracilibacillus lacisalsi BH312 95.07 ++ - - - NMC4-B402
203 R450501 Gracilibacillus lacisalsi BH312 98.01 ++ - - - NMC4-B403
204 R450502 Alteribacillus iranensis DSM 23995 99.06 - - - - NMC4-B404
205 R450503 Oceanobacillus limi H9B 98.03 - - +++ - NMC4-B405
206 R450504 Alteribacillus iranensis DSM 23995 99.08 - - - - NMC4-B406
207 R450505 Oceanobacillus limi H9B 97.82 - - +++ - NMC4-B407
208 R450506-1 Oceanobacillus limi H9B 97.33 - - +++ - NMC4-B408
209 R450507-1 Alteribacillus iranensis DSM 23995 96.74 - - - - NMC4-B409
210 ERB012 Halobacillus sediminis NGS-2 100.00 - - - - NMC4-B456
211 ERB032 Oceanobacillus kimchii X50 100.00 - - + - NMC4-B457
212 ERB054 Marinococcus luteus DSM 23126 99.80 - - - - NMC4-B458
213 ERB061 Marinococcus luteus DSM 23126 99.80 - - - - NMC4-B459
214 ERB081 Chromohalobacter canadensis ATCC 43984 99.93 +++ + ++ - NMC4-B460
215 ERB082 Halobacillus sediminis NGS-2 100.00 + - +++ - NMC4-B461
216 ERB112 Halobacillus dabanensis D-8 100.00 +++ - +++ - NMC4-B462
217 EL1-1 Oceanobacillus picturae R-5321 95.57 +++ - + - NMC5-B418
218 EL1-2 Oceanobacillus picturae R-5321 96.83 - - + - NMC5-B419
219 EL1-4 Oceanobacillus picturae R-5321 96.79 +++ +++ + - NMC5-B420
220 EL1-5 Virgibacillus senegalensis Marseille-P3518 96.47 - +++ - - NMC5-B421
221 EL1-6 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.60 +++ +++ + - NMC5-B422
222 EL1-7 Oceanobacillus picturae LMG 19492 96.02 +++ +++ - - NMC5-B423
223 EL1-8 Virgibacillus senegalensis Marseille-P3518 96.47 - +++ - - NMC5-B424
224 EL2-1 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.03 +++ - + - NMC5-B425
225 EL2-2 Oceanobacillus manasiensis YD3-56 95.80 - - - - NMC5-B426
226 EL2-4 Tenuibacillus halotolerans YIM 94025 98.71 - - - - NMC5-B427
227 EL2-5 Tenuibacillus halotolerans YIM 94025 95.88 +++ - - - NMC5-B428
228 EL2-7 Oceanobacillus picturae LMG 19492 98.81 +++ - - - NMC5-B429
229 EL2-9 Oceanobacillus picturae LMG 19492 97.40 +++ - - - NMC5-B430
230 EL2-10 Oceanobacillus picturae LMG 19492 96.93 +++ - - - NMC5-B431

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분해 효소 및 옥신 생산능 분석

해양 미생물들은 유기물이 부족한 주변 환경에서 생육하 기 위하여 영양분을 분해하여 에너지로 활용하기 위한 다 양한 분해 효소 분비등과 같은 상호작용이 필요할 것으로 예상되어 분리된 호염성 미생물 균주들의 신규 분해 효소 탐색 자원 및 미생물비료로써의 산업적 응용가능성을 확인 하기 위하여 세포외 분해 효소 생산능 및 옥신 생산능 분 석을 실시하였다.

Table 3에 나타낸 것처럼 분리된 230 균주에서 53 균주 를 제외한 모든 균주에서 한 가지 이상의 분해 효소 활성 이 존재하는 것을 확인하였으며, 두 가지 이상의 효소 활 성을 가지는 균주 중 특히 세 가지 효소에 대하여 활성을 모두 가지고 있는 것으로 확인된 17균주(과제기탁번호: NMC5-B365, NMC5-B383, NMC4-B482, NMC4-B485, NMC4-B486, NMC4-B519, NMC5-B444, NMC4-B383, NMC4-B385, NMC4-B387, NMC4-B388, NMC4-B389, NMC4-B397, NMC4-B398, NMC4-B460, NMC5-B420, NMC5-B422)는 Bacillaceae 과 16균주, Halomonadaceae 과 1균주인 것으로 확인하였다. 이 중 11균주는 국외 염전 시료에서 분리된 균주였으며 나머지 6균주가 국내 염전 시 료에서 분리한 균주였다. 또한 옥신 생산능을 확인한 결과, 24 균주에서 생산능이 확인되었으며 신안 토판염에서 분리 된 균주 중 14균주는 모두 Halobacillus sp. 균주였으며 나 머지 10균주는 모두 신안 장판염에서 Kangiella sp. 9균주 와 Halomonas sp. 1균주가 분리되었으며 국외 염전 시료 에서는 옥신 생산능을 가진 균주는 분리되지 않았다. 특히 신안 장판염에서 분리한 균주들의 생산능이 토판염에서 분 리한 균주들의 생성능 보다 높은 것을 알 수 있었으며 이 는 식물생장을 촉진시킬 수 있는 미생물비료 연구에 활용 할 수 있는 미생물 탐색 소재로써 국내 염전 중 장판염으 로 생산하는 천일염이 중요한 원천소재로써의 활용가치가 높을 것으로 예상되었다. 본 연구에서 수행한 결과들은 국 내 생물 자원의 다양성 확보 차원에서 큰 의미를 찾을 수 있을 것이며 국내외 염전 시료에서 분해 효소 탐색을 위한 신균주의 활용 가능성과 산업용 효소 관련 생물공학 및 미 생물비료 연구의 기본 생물소재로 활용이 가능할 것으로 예상된다. 또한 본 연구를 통하여 분리한 모든 균주들은 한국생명공학연구원 미생물가치제고사업단에 기탁하였다.

요 약

본 연구는 국내외 염전 시료로부터 분리한 호염성 미생 물들의 다양성 및 특성에 관하여 조사하였다. 호염성 미생 물의 순수 분리를 위하여 marine agar 배지를 사용하였으 며 37°C에서 호기적으로 배양하였다. 순수 분리 후, 230 균주를 분리하였으며 16S rRNA 염기서열 분석 결과를 바 탕으로 계통학적 분석을 실시한 결과, 4문, 12과, 27속, 64 종으로 구성되어 있는 것을 확인하였다. 특히, Firmicutes 문은 89.6%의 분포를 나타내었으며 3과, 17속, 52종으로, Bacillaceae, Staphylococcaceae와 Carnobacteriaceae로 분포 하는 것을 확인하였다. 그리고 분리한 균주들이 amylase, lipase, protease와 같은 산업적으로 유용한 효소를 생산하 는지 확인하기 위하여 효소 활성 평가를 실시하였으며, 177균주가 최소 한 종류 이상의 효소 활성을 가지고 있는 것을 확인하였으며 세 가지 효소에 대하여 모든 활성을 가 지고 있는 균주도 17균주가 확인되었으며 이는 본 연구를 통하여 분리한 미생물들의 산업적 활용 가능성을 나타내었 다. 그러므로 이번 연구는 국내 유전자원 확보 및 염전 시 료의 호염성 미생물의 다양성과 특성에 관한 과학적 지식 확장에 도움이 될 것으로 생각된다.

감사의 글

이 논문은 2019년도 한국연구재단 이공분야기초연구사업 (NRF-2019R1F1A1060737)과 바이오·의료기술개발사업(NRF- 2013M3A9A5076603)의 지원을 받아 수행된 연구임.

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